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谷胱甘肽依赖性聚合物前药顺式-3-(9H-嘌呤-6-基硫代) - 丙烯酸 - 接枝羧甲基壳聚糖的制备制备、表征与体外释放研究
1.引言
过去二十年来,抗代谢物6-MP已被广泛用于人类白血病和其他一些疾病的化疗。 然而,其水不溶性和与血浆蛋白(Zacchigna 等人,2007) 以及严重的骨髓和肝毒性(Gunnarsdottir 和Elfarra,1999) 限制其应用。 为了解决这些问题,一方面已经合成了一些具有alpha;,beta;不饱和键且对GSH敏感的6-MP的结构类似物。 这种前体药物,如顺式-3-(9H-嘌呤-6-基硫代) - 丙烯酸(PTA)和顺式-6-(2-乙酰乙烯基硫基)嘌呤(AVTP)可以进一步在体内代谢成6-MP(Gunnarsdottir and Elfarra,1999; Gunnarsdottir 等人, 2002). 另一方面,一些可以运载6-MP并且在特定条件下将其释放的载体也处在研究过程。
尽管如此,由于丁烯酸部分的电离和水溶性差,PTA的6-MP释放并不令人满意,而AVTP虽然对肿瘤细胞的细胞毒性增强并且小鼠的骨髓毒性降低(Gunnarsdottir 等人, 2002), 但其仍然不溶于水,而且在其转运过程中难以避免与其他物质的相互作用。对于第二种策略,即采用新型载体来转运6-MP也有其缺点,比如说其不稳定性和药物突然释放。
因此,对基于化学释放动力学的药物载体进行了研究(郑等人,2011)。在这项工作中,通过在羧甲基壳聚糖(CMCS)的NH2上接枝PTA合成了两亲聚合物前药PTA-g-CMCS。CMCS由于其优异的生物相容性,可生物降解性,无毒性和生物活性而被使用,而且注意到,该两亲聚合物具有一些特殊的物理化学性质。此外,据报导,由CMCS开发的两亲载体可以自行组装到纳米尺寸的颗粒。
另外, PTA的alpha;,beta;不饱和键对于产生6-MP具有关键作用。据报道,哺乳动物细胞中GSH的浓度比血浆(微摩尔水平)高得多(毫摩尔水平),并且癌细胞中GSH的浓度比正常细胞中的GSH浓度高4倍,这是因为癌细胞中相对较高浓度的GSH会引起alpha;,beta;不饱和键的裂解并引发6-MP的释放。本研究的目的是构建可响应GSH的纳米级药物系统。 因此,设计并合成了PTA-g-CMCS的两亲聚合物。 其自组装行为进一步研究。 最后,研究了聚合物前药对HL-60细胞系和小鼠胚胎细胞系(L929)的细胞毒性作用及其体外释放特性。
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材料和方法
- 物料
购自玉环海洋生物化学有限公司的CMCS(分子量:2.0times;105Da,3.4times;105Da,命名为CMC的脱S1和CMCS2,其脱乙酰度为90%。通过电位滴定测定,起羧甲基取代度为0.7。(NHS),1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳化二亚胺盐酸盐(EDC HCl),3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基溴化四氮唑(MTT)和GSH来自Sigma-Aldrich Chemical Co.(St.Louis,MO)。6-MP和丙炔酸得自Aladdin Chemical Reagent Co.,Ltd ..所有这些材料和其他化学品都是分析试剂级的,并且在没有进一步纯化的情况下直接使用。 从中国典型培养物保藏中心(CCTCC)购买HL-60细胞和小鼠成纤维细胞系(L929),并在含有葡萄糖(4.5g / L)(补充有10%胎牛血清的意大利Euroclone)的RPMI 1640培养基(Euroclone, Italy ),青霉素(100U / mL),链霉素(100mu;g/ mL)和2mM L-谷氨酰胺。 在95%空气和5%CO2的气氛中将细胞保持在37℃。
2.2前药PTA的制备
PTA按照Turbanova等人的方法合成。将6-MP(1.83g,12mmol)分散在80mL无水甲醇中。 此后,在连续搅拌下加入甲醇钠(2.38g,44mmol),直至6-MP完全溶解,随后引入丙炔酸(0.84g,12mmol)。 连续搅拌反应混合物过夜(15-18小时)并通过加入40mL去离子水淬灭。 为了回收粗产物,向混合物中加入HCl(1M),并沉淀产物如白棉花。 连续加入HCl直至不再有沉淀出现。 通过过滤收集沉淀,通过加入NaOH(1M)重新溶解,并通过加入HCl(1M)重新沉淀。 通过过滤收集纯化的产物,然后真空干燥。 粉碎后,PTA在4℃下保持空气不足。 随后用熔点仪测量PTA的熔点。
2.3.聚合物前药PTA-g-CMCS的合成
在连续搅拌下将CMCS(2.5g)溶于100mL去离子水中直至粉末完全溶解。 将PTA(3.0g在5mL无水二甲基亚砜中)溶液与3.42g EDC·HCl和0.95g NHS反应3小时以形成NHS酯(n氨基:nPTA:nEDC:nNHS= 1:1:1:0.3)。 然后将其逐滴加入前CMCS溶液中,并将反应体系在室温下搅拌72小时。 将反应混合物针对DMSO透析(MWCO 14,000)24小时以除去副产物和过量的反应物,然后针对去离子水处理24小时以去除盐。 将透析液冻干以获得生产产品。 所得产物命名为PTA-g-CMCS2,对应于所用的CMCS。
2.4.PTA和PTA-G-CMCS的表征
傅里叶变换红外光谱仪(Ava-tor360,Nicolet,MA,USA)用于测定PTA和PTA-g-CMCS的官能团。 作为对照,还制备了6-MP和CMCS的样品。
11H NMR:11H NMR谱在Bruker DPX300光谱仪上记录。CMCS和PTA-g-CMCS能溶解在D2O。 通过1H NMR计算PTA的取代度(DS),同时通过元素分析对PTA的DS进行补充估计。
2.5.制备PTA-g-CMCS纳米粒子
将PTA-g-CMCS分别溶于磷酸盐缓冲液(PBS,pH7.4)和乙酸盐缓冲液(pH5.6)中,连续磁力搅拌以形成1mg / mL的溶液。 然后用探针型超声波仪(JY92-2D,中国宁波科技生物技术有限公司)以100W超声处理4分钟。 为了保护溶液免受热量累积,使用脉冲功能(脉冲开启,2.0秒;脉冲关闭,2.0 s)。
2.6纳米粒子的表征
临界胶束浓度(CMC):两亲性PTA-g-CMCS在水性介质中的胶束行为在芘作为荧光探针的存在。制备含有1times;10-6M芘的一系列PTA-g-CMCS1和PTA-g-CMCS2溶液。 样品浓度从3.0times;10minus;6变化到3.0mg / mL,激发波长(lambda;ex)为335nm。
尺寸分布和zeta;电势:使用Zetasizer Nano-ZS ZEN3600(MALVERN仪器)通过动态光散射测量PTA-g-CMCS(1mg / mL)纳米颗粒的平均流体动力学直径和zeta;电势。 所有的测量都是在25℃下进行并重复三次。
透射电子显微镜(TEM):TEM(JEM-100CX11,JEOL)用于观察制备的纳米颗粒的形态。 将一滴样品(1mg / mL)置于碳涂覆的铜网上并在室温下进一步干燥10分钟。 所有样品均未染色。
2.7.体外药物释放研究
药物释放实验在37℃进行。简言之,将PTA-g-CMCS(4.5mg)在4.5mL缓冲液中的溶液在透析管中透析。 然后将透析管浸入含有不同浓度GSH的培养基中。 没有GSH的培养基被用作对照。 在每个特定时间间隔,取出20mu;L释放介质以通过HPLC测量。
使用各种浓度的GSH(2mu;M,100mu;M,1mM,2mM,10mM)研究其GSH依赖性释放动力学,同时使用两种缓冲液(PBS 7.4和乙酸盐缓冲液5.6)模拟血管中的不同微环境和癌细胞。 同时,还研究了药物含量对释放特性的影响。
2.8 MTT测试
将HL-60细胞以1/104细胞/孔的密度接种到96孔微量滴定板中。 24小时后,用完全培养基中的100mu;L/孔系列稀释的样品代替培养基。 将细胞暴露于游离的6-MP(浓度从4.2至21mu;g/ mL变化),PTA-g-CMCS1(浓度范围为50-250mu;g/ mL)和GSH活化的PTA-g-CMCS1(浓度范围从用2mM GSH50-250mu;g/ mL)处理48小时。 然后通过离心(2000rpm,5分钟)除去培养基。另外单独将MTT以5mg / mL溶解于磷酸盐缓冲液(pH7.4)中,并将100mu;L最终浓度为0.5mg的MTT / mL的不含FBS的RPMI1640加入各孔中。 4小时的孵育期后,将样品离心(2000rpm,5分钟)以除去未反应的染料。 将紫色显色剂溶解于100mu;L/孔DMSO中,并通过酶标仪(BIO-TEK,USA)在490nm处定量。 通过(ODcontrol minus; ODtest)/ODcontrol times; 100计算含有和不含样品的对照孔的相对细胞抑制率(%)。数据全部显示空白组没有HL-60细胞。
同时使相同的方法进行PTA-g-CMCS1对小鼠胚泡细胞系(L929)的细胞毒性。 细胞在含有游离6-MP的培养基中培养(浓度范围从4.2到21mu;g/ mL)和PTA-g-CMCS1(浓度范围从50到250mu;g/ mL)。将不含药物的培养基设为对照组通过(ODcontrol minus; ODtest)/ODcontrol times;100计算相对细胞抑制率(%)。所有数据证明空白组缺少小鼠胚胎细胞系(L929)。
3. 结果与讨论
Fig. 1. (A) Synthesis of PTA, (B) synthesis of PTA-g-CMCS, (C) 6-MP release from PTA-g-CMCS in the presence of glutathione (GSH), which follows a Michael addition–elimination reaction: GSH attacks the -C of the unsaturated bonds, leading to the cleavage of the unsaturated bonds
3.1 PTA-g-CMCS的合成与表征
在EDC HCl和NHS的催化下,将PTA接枝到CMCS的伯氨基上。 更具体地说,整个反应采取以下两个步骤:合成PTA(图1A)和PTA-g-CMCS(图1B)。 最初,PTA是由6-MP和丙炔酸合成的,它在分子中引入了一个双键。 经熔点仪测试,我们制备的PTA熔点为236℃,与(Gunnarsdottir 和Elfarra,1999)报告相一致。 在以下步骤中,在EDC HCl和NHS的催化下,将PTA接枝到CMCS的NH2上。 在此反应中,PTA的羧基首先被活化,然后通过碳化二亚胺化学接枝到CMCS上。 PTA-g-CMCS的产率在48和61%之间,并且溶解度测试显示它可以容易地溶解在pH范围为5.0-8.0的含水缓冲液中。 通过FT-IR和1H NMR对PTA和PTA-g-CMCS的化学结构进行了表征。
6-MP,PTA,CMCS和PTA-g-CMCS的FT-IR光谱显示在图2。6-MP在3440cmminus;1(NH,拉伸),2670cmminus;1(SH,拉伸),1610cmminus;1(酰胺I带)具有特征峰,嘌呤环的特征带在795-1cm和478cm-1之间,也在6-MP谱中观察到。
PTA的特征峰在3470cmminus;1(与NH拉伸重叠的OH拉伸带),3080cmminus;1(CH拉伸),1680cmminus;1(酰胺I带)。795-478cm-1(嘌呤环)的峰。与6-MP相比,在3500-3300cmminus;1和1680-1600cmminus;1处增加的PTA强度以及在2670cm-1下降的强度指示6-MP与丙炔酸之间的连接,这说明了PTA的成功合成。
CMCS的特性显示为3500-3200cm-1(-OH伸展带和-NH拉伸重叠),1632cm-1和1411cm-1(COC-对称与反对称拉伸),1060cm-1(吡喃环COC伸缩振动)。与CMCS相比,PTA-g-CMCS在在3400cmminus;1处的强度增加以及在3080cmminus;1处出现的峰表明PTA在CMCS上成功连接。与PTA相比,PTA-g-CMCS在3080cm-1处的强度下降也证明PTA-g-CMCS被成功合成。
给出了CMCS1和PTA-g-CMCS1的1H NMR如图3。 CMCS1的质子分配如下(ppm):2.107(COCH3),2.345(H2),3.3-3.9(H3,H4,H5,H6),4.460(H1),
据报道,PTA的化学位移(Gunnarsdottir 和 Elfar
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